产品简介：
DMT? DNA Selection Beads 可用于高通量测序文库构建中DNA和RNA纯化与片段大小分选，和目前广泛使用的AMPure XP Beads使用方式相同，无需改变任何流程。文库的产量、大小分布与AMPure XP Beads高度一致，因此可以无缝替代AMPure XP Beads。
? 200bp以上的核酸回收率高达90%以上，核酸长度最小要求100bp
? 有效去除dNTP、引物、引物二聚体、盐离子和其它杂质
? 纯化后的产物在4℃温度下保持7天不被降解
? 双链和单链DNA都能得到纯化
? 长达18个月有效期
? 手工操作和自动化工作站操作皆可
产品信息（表1）：
名称 | 货号 | 规格 | 存储 | 报价 |
DMT? DNA Selection Beads | DMT-001 | 1ml | 4℃ | 299 |
DMT-005 | 5ml | 4℃ | 999.00 |
DMT-060 | 60ml | 4℃ | 5999.00 |
DMT-450 | 450ml | 4℃ | 26499.00 |
注意事项：
1. 兼容各品牌的建库试剂盒，和目前广泛使用的AMPure XP Beads使用方式相同，无需改变任何流程。
2. 请勿离心、干燥或者冷冻磁珠，这些操作可能导致磁珠的聚集从而降低结合活性。
3. 磁珠使用前充分混匀，并在室温平衡至少15min。
4. 80%乙醇需现用现配，否则将影响回收效率。
运输与保存： 冰袋运输。2-8℃保存，效期一年。避免冷冻！
片段筛选：
文库大小分选条件参考（表2）
第一轮体积比 (Beads: DNA) | 0.80 × | 0.70 × | 0.60 × | 0.55 × | 0.50 × | 0.45 × |
第二轮体积比 (Beads: DNA) | 0.20 × | 0.20 × | 0.20 × | 0.15 × | 0.15 × | 0.15 × |
文库平均长度 (bp) | 300 | 350 | 400 | 500 | 600 | 700 |
注：表中“×”表示样品DNA体积。如DNA片段大小为300 bp，样品DNA体积为100 mL，则第一轮分选磁珠使用体积为0.80×100 mL=80 mL；第二轮分选磁珠使用体积为0.20×100 mL=20 mL。
操作步骤：
1. 将磁珠由冰箱中取出，室温平衡至少15min。新鲜配制80%乙醇。
2. 在样本中加入ddH2O，至总体积到100ul。
3. 根据分选要求，参考表2，向DNA溶液中加入第一轮分选磁珠，涡旋混匀或移液器吹打10次混匀。
4. 室温孵育5min。
5. 将离心管短暂离心并置于磁力架中，待溶液澄清后（约5min），小心转移上清到干净的离心管中。
注意：转移上清时，请残留2 μL液体于管底，切勿全部吸出上清，避免吸到磁珠并影响分选效果。
举例：当初始体积为100 μL，第一轮使用0.8×比例，即加入80 μL磁珠，推荐吸出178 μL的上清。
6. 参考表2，向上清中加入第二轮分选磁珠。
7. 涡旋混匀或移液器吹打10次混匀，室温静置5min。
8. 将离心管短暂离心并置于磁力架中，待溶液澄清后（约5min），小心移除上清。
9. 加入200μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠，室温孵育30sec，小心移除上清。
10. 重复步骤9。
11. 保持离心管处于磁力架中，开盖干燥磁珠至刚刚出现龟裂（约5min）。
注意：磁珠不要干燥太久，磁珠干燥过度将影响纯化效果。
12. 将离心管从磁力架中取出，加入适量ddH2O（≥20μL），涡旋振荡或使用移液器轻轻吹打充分混匀，室温孵育5min。
13. 将离心管短暂离心，置于磁力架中分离磁珠和液体。待溶液澄清后（约5min），小心吸取上清至干净的管中，即完成分选。
图2 Agilent 2100 high sensitivity DNA chip electopherogram
该产品仅供用于科学研究！